技术文献
相关资讯
技术文献
在ELISA检测中,稀释对照是校正钩状效应影响的核心手段,其必要性体现在以下三方面:
一、验证线性范围与钩状效应
当样本中抗原浓度过高时,过量抗原会同时结合固相抗体和酶标抗体,导致无法形成有效的"夹心"复合物,信号值异常偏低(钩状效应)。通过梯度稀释(如1:10、1:100、1:1000)可观察:
若信号值随稀释比例线性递减,说明原样本浓度在有效范围内
若稀释后信号值显著升高(如1:100稀释后信号值>1:10),则确认存在钩状效应
二、排除基质干扰
样本中的蛋白质、脂质等成分可能非特异性结合抗体,导致假性高/低信号。稀释可降低干扰物浓度,通过比较不同稀释倍数的结果偏差(如未稀释时信号异常,稀释后恢复正常)判断基质效应。
三、确保结果可靠性
平行检测不同稀释样本时,若计算浓度接近(如1:10与1:100稀释结果偏差<15%),可排除操作误差;若偏差较大,需重新检测或调整稀释方案。
操作建议:对高浓度样本(如重组蛋白、感染性疾病样本)必须进行预稀释实验,选择使信号值落在标准曲线中段的稀释倍数(通常1:100-1:1000)。若仍存在钩状效应,可尝试更换检测方法(如化学发光法)或使用F(ab')2片段酶标抗体。
一、验证线性范围与钩状效应
当样本中抗原浓度过高时,过量抗原会同时结合固相抗体和酶标抗体,导致无法形成有效的"夹心"复合物,信号值异常偏低(钩状效应)。通过梯度稀释(如1:10、1:100、1:1000)可观察:
若信号值随稀释比例线性递减,说明原样本浓度在有效范围内
若稀释后信号值显著升高(如1:100稀释后信号值>1:10),则确认存在钩状效应
二、排除基质干扰
样本中的蛋白质、脂质等成分可能非特异性结合抗体,导致假性高/低信号。稀释可降低干扰物浓度,通过比较不同稀释倍数的结果偏差(如未稀释时信号异常,稀释后恢复正常)判断基质效应。
三、确保结果可靠性
平行检测不同稀释样本时,若计算浓度接近(如1:10与1:100稀释结果偏差<15%),可排除操作误差;若偏差较大,需重新检测或调整稀释方案。
操作建议:对高浓度样本(如重组蛋白、感染性疾病样本)必须进行预稀释实验,选择使信号值落在标准曲线中段的稀释倍数(通常1:100-1:1000)。若仍存在钩状效应,可尝试更换检测方法(如化学发光法)或使用F(ab')2片段酶标抗体。
